Page 67 - 《广西植物》2023年第11期
P. 67
11 期 梁考云等: 药用红树木榄胚轴抗 HBV 化学成分的研究 2 0 2 7
到的单体化合物稀释成 100 μgmL ꎬ同时使用 表 1 木榄胚轴粗提物及各萃取部位对
 ̄1
100 μgmL 拉米夫定(3TC) 作为阳性对照ꎬ另设 HepG2.2.15 细胞增殖的影响
 ̄1
阴性对照组ꎮ 使用乙型肝炎核酸定量检测试剂盒 Table 1 Effects of crude extracts and extracted
parts of hypocotyl of Bruguiera gymnorhiza
检测第 6 天细胞上清液中 HBV DNA 的含量ꎮ
on proliferation of HepG2.2.15 cells
2 结果与分析 细胞存活率 Cell viability (%)
提取物
Extract 500 250 125
2.1 活性部位筛选结果 μgmL  ̄1 μgmL  ̄1 μgmL  ̄1
高浓度药物作用于细胞ꎬ会引起细胞变形、死 粗提物 73.66± 95.05± 102.62±
亡ꎬ从而导致乙肝病毒标志物分泌量减少ꎬ对药物 Crude extract 6.28a 4.61b 4.14
石油醚部位 64.54± 90.51± 101.59±
抗乙肝病毒作用的判定产生影响( 刘建京和林秀
Petroleum ether extract 1.81a 1.26b 6.88
玉ꎬ1995)ꎮ 因此ꎬ需确定对 HepG2.2.15 细胞基本 乙酸乙酯部位 44.08± 50.81± 76.29±
Ethyl acetate extract 1.28a 0.91a 0.86a
无毒性的药物剂量进行乙肝病毒实验ꎮ 采用 MTT
正丁醇部位 62.22± 87.04± 93.62±
方法 测 定 木 榄 胚 轴 粗 提 物 和 不 同 萃 取 部 位 对 n ̄butanol extract 3.37a 1.37a 5.54
HepG2.2.15 细胞增殖的影响ꎬ确保后续抗 HBV 活 水部位 95.49± 92.13± 95.24±
Water extract 1.61 5.75 9.56
性实验在基本无毒的条件下进行ꎮ 由表 1 可知ꎬ
拉米夫定 — 88.11± —
与阴性对照组相比ꎬ粗提物和其他部位在 500、250 3TC 1.61
μgmL 浓度下对细胞增殖均有显著抑制作 用 阴性对照 — 100.00± —
 ̄1
Control 2.36
(P<0.05)ꎬ水部位对细胞的增殖无抑制作用ꎮ 粗
 ̄1 注: a 表示与阴性对照组比较ꎬ差异显著( P<0.05)ꎻ b 表示
提物和其他部位在 125 μgmL 下对 HepG2.2.15
与阴性对照组比较ꎬ差异极显著(P<0.01)ꎮ 下同ꎮ
细胞无毒副作用ꎬ后续活性实验可使用 125 μg
Note: a indicates significant differences vs Control ( P< 0.05)ꎻ
 ̄1
mL 或者更低量为给药浓度ꎮ b indicates extremely significant differences vs Control ( P <
HBV ̄DNA 为乙肝病毒复制的基础ꎬ也是检测 0.01). The same below.
乙肝病毒复制的直接指标ꎬ研究表明慢性 HBV 感
染的传染性强弱跟 HBV DNA 水平密切相关ꎬ同时 (1Hꎬ dꎬ J = 8.07 Hzꎬ H ̄6)ꎬ 5.78 (1Hꎬ dꎬ J =
HBV DNA 复制水平会变化ꎬ乙肝疾病的病理现象 5.46 Hzꎬ H ̄1′)ꎬ 5.65 (1Hꎬ dꎬ J = 8.04 Hzꎬ H ̄
也会变化ꎮ 乙肝病毒 DNA 定量检测是最直接检 5)ꎬ 4.02 (1Hꎬ tꎬ J = 5.34 Hzꎬ H ̄2′)ꎬ 3.96 (1Hꎬ
测其是否发生复制的方法( 王光彦等ꎬ2022)ꎮ 现 tꎬ J = 4.53 Hzꎬ H ̄3′)ꎬ 3.84 ( 1Hꎬ qꎬ J = 3.44
今可通过检测给药后 HBV DNA 复制水平来判断 Hzꎬ H ̄4′)ꎬ 3.62 (1Hꎬ dtꎬ J = 3.06ꎬ 12.11 Hzꎬ H ̄
是否具有抗 HBV 活性ꎮ 木榄胚轴粗提物及萃取 5′)ꎬ 3.55 (1Hꎬ dtꎬ J = 3.01ꎬ 12.20 Hzꎬ H ̄6′)ꎻ
13
部位对 HepG2.2.15 细胞上清 HBV DNA 影响ꎮ 实 C NMR (125 MHzꎬ DMSO ̄d ) δ : 150.8( C ̄2)ꎬ
6
C
验结果如图 1 所示ꎬ与阴性对照组相比ꎬ石油醚部 163.2 ( C ̄4)ꎬ 101. 8 ( C ̄5)ꎬ 140. 8 ( C ̄6)ꎬ 87. 7
位未表现出抑制细胞上清 HBV DNA 水平作用ꎮ ( C ̄1′)ꎬ 69.9 (C ̄2′)ꎬ 73.6 (C ̄3′)ꎬ 84.9 (C ̄4′)ꎬ
木榄粗提物、水部位、正丁醇部位均使细胞上清 60.9 ( C ̄5′)ꎮ 化 合 物 波 谱 数 据 与 文 献 ( Wang et
HBV DNA 的水平显著降低( P<0.05)ꎮ 正丁醇部 al.ꎬ 2010)具体报道基本一致ꎬ故鉴定为尿嘧啶ꎮ
位抑制HepG2.2.15细胞分泌的 HBV DNA 具有极 化合 物 2 白 色 粉 末ꎮ ESI ̄MS m / z: 243. 1
+ 1
显著作用(P<0.01)ꎬ抑制效果强于木榄胚轴粗提 [M+H] ꎬ 分 子 式: C H N O ꎮ H NMR ( 500
10
14
5
2
物ꎬ因此选择木榄胚轴正丁醇部位作为研究对象ꎬ MHzꎬ DMSO ̄d ) δ : 11.27 (1Hꎬ sꎬ H ̄3)ꎬ 7. 70
H
6
进行物质基础研究ꎮ (1Hꎬ dꎬ J = 1.51 Hzꎬ H ̄6 )ꎬ 6.17 (1Hꎬ ddꎬ J =
2.2 化学成分结构鉴定(具体结构见图 2) 6.13ꎬ 7.63 Hzꎬ H ̄1′)ꎬ 4.24 (1Hꎬ dtꎬ J = 2.98ꎬ
化合 物 1 白 色 结 晶ꎮ ESI ̄MS m / z: 244. 7 2.98ꎬ 5.86 Hzꎬ H ̄3′)ꎬ 3.76 (1Hꎬ qꎬ J = 3.72ꎬ
+ 1
[ M+H] ꎬ 分 子 式: C H N O ꎮ H NMR ( 500 3.72ꎬ 3.73 Hzꎬ H ̄4′)ꎬ 3.56 (2Hꎬ mꎬ H ̄5′)ꎬ 2.07
9 12 2 6
MHzꎬ DMSO ̄d ) δ : 11.31 ( 1Hꎬ sꎬ H ̄3) ꎬ 7.89 (2Hꎬ mꎬ H ̄2′)ꎬ 1. 77 ( 3Hꎬ dꎬ J = 1. 18 Hzꎬ
6 H