Page 57 - 《广西植物》2020年第2期
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1 9 4                                 广  西  植  物                                         40 卷
   成由生工生物工程(上海)股份有限公司完成ꎮ                             PCR 上游引物为 TTTGGGTTATCCTGACACTGGTꎬ下
   1.2 试验方法                                          游 引 物 为 TCCTGAAGGGAACCCGAAGꎮ EF1α 内
   1.2.1 总 RNA 的提取和 cDNA 第一链的合成  采                   参基因 上 游 引 物 为 GCCGTCCTTATTATTGATTCCAꎬ
   用 OMEGA HP Plant RNA Kit 植物总 RNA 提取试              下 游 引 物 为 GGGATCTTATCAGGATTGTAACCAꎮ
   剂盒ꎬ按照其说明要求进行 RNA 提取ꎮ 利用反转                         反应体系共 20.0 μL:2 ×SYBR       ®  premix Ex Taq Ⅱ
   录酶 M ̄MLV 将白及总 RNA 反转录成 cDNA 第一                    10.0 μLꎬ10 μmolL 上、下游引物各 0.8 μLꎬDNA
                                                                         ̄1
   条链ꎬ作为白及 SuSy 基因克隆的模板ꎮ                             模板 2 μLꎬ灭菌蒸馏水 6.4 μLꎮ 扩增程序:95 ℃
   1.2.2 设计简并引物  根据 NCBI 中已经登录的单                     预变性 30 sꎬ95 ℃ 变性 15 sꎬ58 ℃ 退火 15 sꎬ共 41
   子叶植物 SuSy 基因ꎬ经 DNAMAN 序列比对ꎬ找出其                    个循环ꎮ qRT ̄PCR 结果按照公式 Rel. Exp = 2            ̄ΔΔCt
   中保守的核苷酸序列ꎬ在 SuSy 基因的保守区设计一                        计算该基因的相对表达量ꎮ 式中:ΔCt = Ct(SuSy) -
   对简并引物ꎬ上游引物为 TTTGGGTTATCCTGACACT ̄                  Ct(EF1a RNA)ꎻΔΔ Ct = (各植物组织 ΔCt) -(一年
   GGTꎬ下游引物为 TCCTGAAGGGAACCCGAAGꎬ用于                  生块茎 ΔCt)ꎮ 数据差异性采用 SPSS 17. 0 ( SPSS

   扩增目的基因ꎮ                                           Inc.ꎬ Chicagoꎬ USA)软件进行单因素方差分析ꎮ
   1.2.3 PCR 扩增 SuSy 基因保守区  以逆转录获得
                                                     2  结果与分析
   的 cDNA 为模板ꎬ利用上游引物和下游引物 PCR
   扩增白及的 SuSy 基因保守片段ꎮ 反应体系 10 ×
                                        ̄1            2.1 白及 RNA 提取
   PCR buffer 2.0 μLꎬdNTP (2.5 μmolL ) 1.6 μLꎬ
                      ̄1
   MgCl ( 25 μmol  L ) 1. 5 μLꎬ 上、 下 游 引 物 ( 10        由电泳结果可知ꎬ白及叶片总 RNA 有完整的
       2
            ̄1                                        28S、18S 和 5S 条带(图 1)ꎬ表明提取的总 RNA 完
   μmolL ) 各 1. 0 μLꎬ Taq DNA 聚 合 酶 ( 5 U 
       ̄1                                             整性较好ꎬ很少出现降解现象ꎬOD260 / 280 的值为
   μL )0.2 μLꎬ模板 cDNA 1.0 μLꎬ定量补足 ddH O
                                               2
                                                                                ̄1
   至 20 μLꎮ PCR 反应条件:94 ℃ 预变性 3 minꎬ94               2.12ꎬ浓度为 110.23 ngμL ꎮ
   ℃ 变性 30 sꎬ58.5 ℃ 退火 30 sꎬ72 ℃ 延伸 3 minꎬ30
   个循环ꎬ72 ℃ 延伸 5 minꎮ
   1.2.4 白及 SuSy 基因保守区的鉴定  取 PCR 产物
   进行经琼脂糖凝胶电泳检测ꎬ待检测之后ꎬ将扩增
   产物进行 T ̄A 连接ꎬ转入大肠杆菌 DH5α 菌株进
   行测序分析ꎮ 将测序结果进行 Blast 比对分析ꎬ验
   证测序结果的正确性ꎮ.
   1.3 SuSy 基因的生物信息学分析
       基因相似性采用 NCBI 上的 BLAST 分析ꎬ氨基
   酸序列比对采用 DNAMAN 分析ꎬ蛋白质亲疏水性
   采用 ProtScale 分析ꎬ亚细胞定位采用 PSORT Ⅱ软
   件分析ꎬ蛋白质二级结构预测采用 ExPASy 网站上                                    图 1  白及总 RNA 电泳图
   的 GOR 分析ꎬ系统进化树采用 MEGA6.0 分析ꎬ蛋                        Fig. 1  Total RNA electrophoresis of Bletilla striata
   白质三级结构预测采用 ExPASy 网站上的 SWISS ̄
   MODEL 分析ꎮ                                         2.2 SuSy 基因的克隆
   1.4 SuSy 基因的表达分析                                      以白及叶片总 RNA 反转录 cDNA 为模板ꎬ以
       根据 SuSy 基 因 序 列 设 计 出 特 异 性 较 强 的             简并引物对保守区片段进行 RT ̄PCR 扩增ꎬ得到 1
                            ®                        个 2 215 bp 保守片段ꎬ编码 737 个氨基酸ꎬ连接到
   qRT ̄PCR 引物ꎬ参照 SYBR         Premix Ex TaqTM Ⅱ
   使 用 说 明ꎬ 用 qRT ̄PCR ( Real ̄time quantitative       pGEM ̄T Easy 载体上测序验证ꎬ得到的阳性质粒命
   PCR)的方法检测 SuSy 基因在白及不同生长阶段                        名为 pGEM ̄SuSy(图 2)ꎮ
   不同组织的表达量ꎬ白及 EF1α 基因作为内参基因                         2.3 SuSy 蛋白亲疏水性分析

   (GenBank 登 录 号: MK448293)ꎮ SuSy 基 因 qRT ̄              利用 ProtScale 在线分析软件分析显示ꎬSuSy
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