Page 144 - 广西植物2024年1期

１ ４ ０ 广 西 植 物 ４４ 卷
切片ꎮ 将取得的材料在清水中冲洗干净ꎬ用便携
１ 材料与方法 式滑动切片机对材料进行横切ꎬ制成厚度为 １０ μｍ
的切片ꎮ 将切片放在碘－碘化钾染液(将 ２４ ｇ 碘化
１.１ 材料 钾溶于 １５ ｍＬ 蒸馏水ꎬ加入 １ ｇ 碘ꎬ溶解后用蒸馏
试验用苗为温室种植的蒜头果实生苗ꎮ 种子 水定容至 ３００ ｍＬ) 中染色 ３０ ｍｉｎ 后ꎬ于蒸馏水中
采自云南省文山州广南县ꎬ去除外果皮和中果皮 洗涤脱色 １ ｍｉｎꎬ将切片置于甘油中ꎬ用体式显微

后播种于穴盘内(长 × 宽 × 高 ＝ ４６ ｃｍ × ４６ ｃｍ × 镜( 型号: ＯｌｙｍｐｕｓＳＺＸ７ꎬ产地:日本) 在 ５６ ×的放
１１ ｃｍ)ꎬ在昆明植物研究所玻璃温室(２５°０８′２２″ 大倍数下观察ꎮ 淀粉会被染成蓝黑色ꎬ因此可根
Ｅ、１０２°４４′２３″ Ｎꎬ海拔 １ ９９０ ｍ)培养ꎮ 为方便取根 据材料中被染成蓝黑色的深浅程度和着色面积ꎬ
观察并控制养分供给ꎬ栽培基质采用珍珠岩ꎮ 种 评估淀粉含量水平ꎮ
子萌发出土后每周按照盆土体积的 １％施加 １ 次 １.３ 数据统计分析
Ｌｏｎｇ Ａｓｈｔｏｎ 标准营养液ꎬ按需浇水ꎮ 试验用幼苗 使用 ＳＰＳＳ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃｓ ２６ 对蒜头果幼苗中 ３ 种矿
分别在没有寄主植物的条件下独立生长了半年、 质元素浓度数据进行分析ꎬ采用双因素方差分析
两年和三年ꎬ在植株形态上有明显差异( 图 １)ꎮ 法(ｔｗｏ￣ｗａｙ ＡＮＯＶＡ) 分析独立生长时间长短不同
半年生苗长势旺盛ꎬ侧根较多ꎬ发新根能力最强ꎬ 的蒜头果幼苗各组织间 Ｎ、Ｐ、Ｋ 元素浓度的差异ꎬ
在前期试验中移栽到肥沃土壤中半年后平均成活 并利用绘图软件 ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ８ 制图ꎮ
率为 ８６.７０％ꎬ单位土体内的新根密度平均为 １.０４
ｍｇｃｍ ꎻ两年生苗长势良好ꎬ侧根发达ꎬ具备一 ２ 结果与分析
￣３
定的发新根能力ꎬ移栽到肥沃土壤中半年后平均
成活率为 ８３.３０％ꎬ单位土体内的新根密度平均为 ２.１ 植株体内淀粉含量变化特征
０.５８ ｍｇｃｍ ꎻ三年生苗有部分植株开始出现叶 从组织切片染色结果来看ꎬ蒜头果幼苗衰退
￣３
片变黄等明显的生长衰退现象ꎬ侧根数量少ꎬ较难 过程中植株淀粉含量呈逐渐降低的趋势( 图 ２)ꎮ
发新根ꎬ即便移栽到肥沃土壤中ꎬ半年后平均成活 由图 ２ 可知ꎬ半年生蒜头果幼苗淀粉含量最高ꎬ其
率仅为 １３.７０％ꎬ极少发出新根ꎮ 次为两年生幼苗ꎬ三年生蒜头果幼苗中所含淀粉
１.２ 样品采集和处理 极为有限ꎮ
１.２.１ 蒜头果幼苗衰退过程中各部位 Ｎ、Ｐ、Ｋ 浓度 蒜头果幼苗的淀粉主要贮藏在膨大的茎基部
测定 从 ３ 种不同生长状态的蒜头果幼苗( 半年 和肉质的根系中ꎬ皮层、韧皮射线、木射线和髓的
生苗、两年生苗和三年生苗) 中各随机选择 ５ 个植 薄壁细胞中均含有大量淀粉( 图 ２)ꎮ 幼苗茎中的
株ꎬ分别将每个植株的叶片、茎杆、主根及侧根分 淀粉含量普遍较低ꎬ各供试幼苗之间茎部淀粉含
开采集并装入纸袋ꎮ 将采集的材料在 ７５ ℃ 烘箱 量水平差异不明显ꎻ其他几个取样部位的淀粉含
中烘干 ２４ ｈ 后ꎬ使用全自动样品快速研磨仪( 型 量在不同活力幼苗间差异均较为明显ꎬ且随着幼
号: ＪＸＦＳＴＰＲＰ￣２４) 研磨制样ꎬ分别使用凯氏定氮 苗活力的降低而降低ꎮ 独立生长半年的蒜头果幼
仪(型号: ＢＵＣＨＩ Ｋ￣３６０)、电感耦合等离子体发射 苗茎根交界处、根顶膨大处、主根及侧根皮层着蓝
光谱仪(型号: ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ Ａｖｉｏ ２００)、连续光源原 黑色程度最深ꎬ提示其淀粉含量水平在所有供试
子吸收光谱仪( 型号: Ｊｅｎａ ｃｏｎｔｒＡＡ３００) 测定各样 幼苗中最高ꎻ独立生长两年后ꎬ蒜头果幼苗茎根交
品的 Ｎ、Ｐ、Ｋ 浓度ꎮ 各植株的叶片 Ｎ / Ｐ 比根据叶 界处、根顶膨大处、主根及侧根皮层中着色均较半

片中 Ｎ 和 Ｐ 的浓度计算得出ꎮ 年生幼苗的浅ꎬ表明此时幼苗的淀粉含量已明显
１.２.２ 蒜头果幼苗衰退过程中茎杆和根部淀粉含 降低ꎻ独立生长三年后ꎬ蒜头果幼苗茎根交界处、
量水平的组织切片染色观察 从 ３ 种不同生长状 根顶膨大处及侧根皮层中均无明显着色或着色很
态的蒜头果幼苗( 半年生苗、两年生苗和三年生 浅ꎬ主根皮层中着色也很浅ꎬ表明此时幼苗中的淀
苗)中各随机选择 ５ 个植株ꎬ分别在每个植株的茎 粉含量极低ꎮ
中部、茎根交界处、根顶端膨大处、主根中段及距 ２.２ 不同组织中 Ｎ、Ｐ、Ｋ 浓度及叶片 Ｎ/ Ｐ 比变化特征
离主根 １ ｃｍ 处的侧根取 ０.５ ~ １ ｃｍ 长的材料进行 整体来看ꎬ蒜头果幼苗组织中 Ｎ、Ｐ 和 Ｋ 浓度受