Page 114 - 《广西植物》2020年第1期
P. 114

1 1 0                                 广  西  植  物                                         40 卷
   取出后用无菌水漂洗 4 ~ 5 次ꎻ之后放置到无菌不                        部附着的培养基ꎬ在 1 000 倍的“ 枯萎根腐特效
   锈钢盘中ꎬ剪掉两端伤口ꎬ保留 2 ~ 4 cm 的带腋芽                      灵—噁霉嘧啶申嗪” 溶液中消毒 2 ~ 3 minꎻ用
   茎段ꎬ接种到初代诱导培养基中ꎮ 培养 14 d 后ꎬ统                       该药剂喷洒消毒移栽基质( 园土、泥碳土和椰糠)
   计消毒污染率和存活率( 表 1)ꎮ 污染率 = 污染的                       后ꎬ装于营养杯中ꎬ栽种上青钱柳生根苗ꎬ在荫蔽
   外植体数 / 总外植体数×100%ꎻ存活率 = 存活的无                      度 70%的大棚中培养ꎬ注意保持环境及基质湿度ꎬ
   菌外 植 体 数 / ( 总 外 植 体 数 - 污 染 的 外 植 体              每周喷上述药剂预防病害ꎮ 40 d 后统计移栽成活
   数) ×100%ꎮ                                         率(表 7)ꎮ 根据不同移栽基质、移栽季节的移栽成
   1.2 培养基制备及筛选                                      活率ꎬ确定适合青钱柳组培苗移栽的基质和时间ꎮ
       初代培养基:以 MS 和 WPM 为基本培养基ꎻ通                     1.5 数据统计
   过初 步 的 预 实 验ꎬ 按 10 ∶ 1 的 比 例ꎬ 添 加 6 ̄BA                外植体消毒处理与初代培养实验每个处理 60
                           ̄1
   (1.0、2.0、4.0、8.0 mg∙L ) 和 IBA(0.1、0.2、0.4、        瓶ꎬ重复 3 次ꎻ继代与生根培养实验每个处理 10
              ̄1                    ̄1                 瓶ꎬ重复 3 次ꎮ 所有数据用 SPSS 统计软件进行统
   0.8 mg∙L )ꎬ附加蔗糖 30 g∙L 、琼脂 3.3 g∙
   L ꎬpH 5.8(表 2)ꎮ 通过观测统计不同培养基芽诱                     计分析ꎮ
     ̄1
   导率及芽苗生长情况ꎬ筛选出最佳初代诱导培养
   基配方ꎮ 芽诱导率 = ( 萌芽的外植体数 / 消毒成功                      2  结果与分析

   的外植体数) ×100%ꎮ
       继代增殖培养基:以 MS 为基本培养基ꎬ添加不                       2.1 外植体采集及消毒

   同浓度和组合的植物生长调节剂ꎬ附加蔗糖 30 g∙                             比较不同采样时间、外植体部位和消毒时间
   L 、琼脂 3.3 g∙L ꎬpH 5.8ꎻ所用的植物生长调节剂                  对青钱铆消毒成功率和存活率的影响( 表 1)ꎮ 结
                    ̄1
     ̄1
   包括 6 ̄BA、KT、ZT、IBA、NAA、IAA 和 TIBA(三碘苯              果发现:(1) 在 8 月—10 月份采样ꎬ不论是顶芽、
   钾酸)(表 3ꎬ表 4)ꎮ 筛选增殖系数高、继代芽苗健                       未木质化茎段或轻微木质化茎段ꎬ也不论消毒时

   壮、效果稳定的继代增殖和壮苗培养基配方ꎮ                              间长短ꎬ污染率均较高ꎬ为 67.6%ꎻ且所有的外植
       生根培养基:以 1 / 2MS 和 1 / 2WPM 为基本培               体在后续的培养过程中全部褐化死亡ꎮ (2) 在 4
   养基ꎬ添 加 不 同 种 类、 浓 度 和 组 合 的 IBA、 NAA、             月—6 月份采样ꎬ顶芽及未木质化茎段为外植体ꎬ
   IAA、DA ̄6(己酸二乙氨基乙醇酯ꎬ又名胺鲜脂) 和                       消毒后 2 ~ 3 d 内全部褐化死亡ꎮ 而轻微木质化茎
                                                ̄1
   5 ̄NGS(5 ̄硝基愈创木酚钠)ꎻ附加蔗糖 20 g∙L 、                    段为外植体ꎬ消毒 5 ~ 7 minꎬ污染率 45.9%ꎬ存活率
   琼脂 3.3 g∙L ꎬpH 5.8( 表 5 和表 6)ꎮ 筛选合适               高达 88.7%ꎻ轻微木质化茎段消毒 8 ~ 10 minꎬ污染
                 ̄1
   的生根培养基配方ꎮ                                         率 43.9%ꎬ褐化死亡率增多ꎬ存活率下降至 65.3%ꎮ
       上述每次实验每个处理 10 ~ 60 瓶ꎮ 培养基配                    统计结果显示ꎬ5 ~ 7 min 和 8 ~ 10 min 的消毒处理ꎬ
   制分装后ꎬ于 125 ℃ 灭菌 25 minꎬ冷却待用ꎮ                      污染率差异不明显ꎬ但存活率差异较大ꎮ 综上所
   1.3 接种和培养                                         述ꎬ青钱铆外植体最佳的采集时间为 4 月—6 月ꎻ
       初代接种:为防交叉感染ꎬ每瓶接种 1 个外植                        最佳外植体部位为轻微木质化茎段ꎻ最佳消毒方
   体ꎮ 继代接种:当芽苗长到 3 ~ 5 cm 时ꎬ将再生芽                     法为 0.1% HgCl 浸泡 5 ~ 7 minꎮ
                                                                    2
   分成单芽ꎬ剪掉叶片后切成含 1 个腋芽节段ꎬ接种                          2.2 初代培养
   于继代培养基上ꎬ每瓶 8 ~ 10 个接种点ꎬ培养时间                           将经表面消毒的青钱柳轻微木质化茎段接种
   30 ~ 40 dꎮ 生根接种:选择高度 4.5 cm 以上、植株                 于不同初代诱导培养基上( 表 2)ꎬ培养 3 周后发
   健壮的继代芽苗ꎬ从基部剪下ꎬ整株接入生根培养                            现ꎬ在以 MS 和 WPM 为无机盐的培养基上均能生
   基中ꎬ每瓶接种 8 ~ 10 株ꎬ培养时间 30 ~ 40 dꎮ 培                长ꎬ但以 MS 为无机盐的培养基的芽诱导率和芽苗

   养条件:培养温度为(28±3) ℃ ꎬ光照时间为 10 ~                     高度均优于 WPMꎮ 培养基中的 6 ̄BA 和 IBA 在低
                                                                          ̄1
                                                                                           ̄1
           ̄1                            ̄2   ̄1        浓度(1.0 ~ 2.0 mg∙L +0.1 ~ 0.2 mg∙L ) 时芽苗
   12 hd ꎬ光照强度为 30 ~ 40 μmolm s ꎮ
   1.4 生根苗炼苗移栽                                       生长较快ꎻ在高浓度(8.0 mg∙L + 0.8 mg∙L )
                                                                                                  ̄1
                                                                                     ̄1
       当青钱柳组培苗长出 2 ~ 5 条根、根长 2.0 cm                  时ꎬ腋芽萌发和芽苗生长均显著受到抑制ꎮ 总体
   以上时ꎬ将生根瓶苗开盖炼苗 3 ~ 5 dꎬ洗净植株根                       上看ꎬ 青钱柳在初代培养阶段耐受的植物生长调
   109   110   111   112   113   114   115   116   117   118   119