Page 86 - 《广西植物》2024年第12期
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al.ꎬ 2016)ꎬ而 NAC 转录因子被认为是 ABA 信号 1.2 CoNAC5 和 CoNAC79 基因的克隆
途径中 的 重 要 转 录 激 活 调 控 因 子 ( Wang et al.ꎬ 基于油茶全基因组数据( https: / / github. com /
2016)ꎮ 例 如ꎬ Chen 等 ( 2014) 发 现 过 表 达 水 稻 Hengfu ̄Yin / CON _ genome _ data )ꎬ 获 得 CoNAC5、
OsNAC 可通过 ABA 介导的气孔关闭以降低叶片 CoNAC79 基因序列ꎬ利用 SnapGene 软件进行基因
失水率ꎬ显著提高水稻抗旱性ꎻShang 等(2020) 发 特异性引物设计( 表 1)ꎮ 总 RNA 采用 TastPure ®
现 GhirNAC2 通过调控 GhNCED3a / 3c 的表达ꎬ控制 Universal Plant Total RNA Isolation Kit Vazyme Cat
ABA 的生物合成和气孔关闭ꎬ从而在棉花抗旱性 (RC411 ̄01ꎬ诺唯赞) 试剂盒提取ꎬ方法按照说明
中发挥积极作用ꎮ 书ꎮ 1%琼脂糖凝胶电泳检测 RNA 质量ꎬEppendorf
®
课题组前期基于二倍体油茶基因组数据ꎬ利 μCuvette G1.0 核酸蛋白测定仪检测 RNA 浓度ꎮ
用生物信息学手段分析鉴定了油茶 NAC 基因家族 使用 HiScriPT lll All ̄in ̄one RT ̄SuperMix Perfect for
成员并对部分成员开展干旱胁迫下表达模式分析 qPCR(R333ꎬ诺唯赞)试剂盒反转录合成 cDNAꎬ按
(曹瑞兰等ꎬ2021)ꎮ 进一步对转录组数据分析发 说明书描述的方法操作ꎮ 以获得的 cDNA 为模板ꎬ
现 ATNAC3 亚组的 CoNAC5、CoNAC79 在干旱胁迫 KL ̄CoNAC5 ̄F / R 与 KL ̄CoNAC79 ̄F / R 为 引 物 ( 表
TM
下表达量均上调ꎬ而系统发育分析发现同组的拟 1)ꎬ 利 用 Ex Premier DNA Polymerase Dye plus
南芥 AtNAC019、AtNAC055、AtNAC072 基因ꎬ被证实 (TaKaRaꎬ大连) 高保真酶ꎬ进行 PCR 扩增ꎮ 反应
程序:95 ℃ 10 minꎬ95 ℃ 30 sꎬ59 ~ 62 ℃ 30 sꎬ72
参与逆境胁迫过程(Tran et al.ꎬ 2004ꎻ Jiang et al.ꎬ
℃ 2 minꎬ30 个 循 环ꎻ72 ℃ 5 minꎬ4 ℃ 保 温ꎮ 将
2009)ꎬ因此推测 CoNAC5、CoNAC79 可能参与油茶
PCR 扩增产物经 1%琼脂糖凝胶电泳检测ꎬ目的条
干旱胁迫调控过程ꎬ但是其转录活性和调控机制
带回收纯化后将其连接至 pMD19 ̄T 克隆载体ꎬ并
尚不清楚ꎮ 本研究采用 TA 克隆获得 CoNAC5 和
转大肠杆菌 DH5α 中ꎬPCR 检测出阳性克隆ꎬ委托
CoNAC79 的 CDS 序列ꎬ通过生物信息学、亚细胞定
生工生物工程(上海)股份有限公司测序并比对测
位、酵母自激活和荧光定量 PCR 分析ꎬ拟探讨以下
序结果ꎬ保菌并使用 EasyPure Plasmid MiniPrep Kit
问题:(1)两个油茶 NAC 基因的结构、进化关系及
(EM101 ̄01ꎬ全式金)质粒小提试剂盒提取质粒ꎮ
其亚细胞定位ꎻ(2)自激活活性及其具体的激活区 1.3 CoNAC5 和 CoNAC79 基因的生物信息学分析
域ꎻ(3) 两个油茶 NAC 基因在不同组织和干旱胁
利用 Expasy ̄ProtParam 对测序正确的 CoNAC5
迫下表达模式差异及其可能参与干旱响应的信号
与 CoNAC79 基因编码氨基酸序列的理化性质进行
途径ꎮ 本研究旨在为深入探究油茶响应干旱胁迫
在线分析ꎬ利用 DNAMAN 软件将油茶 CoNAC5 与
分子调控网络提供参考ꎬ为油茶抗逆分子育种计
陆地棉( Gossypium hirsutumꎬXP_016732489.2)、君
划提供候选基因ꎮ
迁子 ( Diospyros lotusꎬ XP _ 052206324. 1 )、 柿 子
( Diospyros kakiꎬ AZL _ 19402. 1 )、 胡 桃 ( Juglans
1 材料与方法 regiaꎬXP_018851445.1) 等序列ꎬCoNAC79 与荔枝
(Litchi chinensisꎬUKF_18671.1)、猕猴桃( Actinidia
1.1 试验材料、生长条件以及胁迫处理
chinensisꎬQQG _ 64095. 1)、 柑 橘 ( Citrus reticulataꎬ
选取长势一致的两年生“长林 18”油茶嫁接苗
AYC_35383.1)、马铃薯( Solanum tuberosumꎬATD_
为试验材料ꎬ在江西农业大学林学院校内实践基 50216.1)等序列进行比对ꎬ并利用 TBtools 软件构
地(28°46′ N、115°55′ E)温室大棚开展盆栽试验ꎮ 建进化树和保守基序ꎮ
采用水 培 法ꎬ 将 油 茶 根 部 浸 润 在 30% 聚 乙 二 醇 1.4 EGFP ̄CoNAC5 和 EGFP ̄CoNAC79 的载体构
(PEG6000)溶液中模拟干旱ꎻABA 处理则采用叶 建及亚细胞定位
面喷施法ꎬ在油茶叶面喷洒浓度为 200 ngmL 的 使用 SnapGene 软 件 设 计 同 源 重 组 引 物 CZ ̄
 ̄1
ABA 溶液ꎮ 于 12、24、36、48 h 采集各处理和对照 ECoNAC5 ̄F / R 和 CZ ̄ECoNAC79 ̄F / R( 表 1)ꎬ以油
®
的嫩叶ꎬ每个处理设置 3 次重复ꎮ 采集根、茎、叶、 茶 cDNA 为模板进行扩增ꎬ利用 ClonExpress Ultra
花、幼果、种仁各部位材料ꎬ置于液氮中速冻ꎬ- 80 One Step Cloning Kit( C115ꎬ诺唯赞) 同源重组酶ꎬ
℃ 保存备用ꎮ 构建 EGFP ̄CoNAC5 与 EGFP ̄CoNAC79 植物表达