Page 125 - 《广西植物》2020年第1期
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1 期                   黄小龙等: 刺梨 GL2 同源基因的克隆、系谱树和表达分析                                        1 2 1

   明ꎬGL2 是 GL1 和 TTG1 的下游调控基因 (Pesch &               (放入 36 ℃烘箱ꎬ放置 3 d 以上)洗涤ꎮ 将已固着和
   Hülskampꎬ 2011)ꎮ                                  修好的蜡块装在样品固定器上ꎬ并固定好ꎮ 将切片
       本研究利用贵州省广泛种植的‘贵农 5 号’ 分                       刀装在切片机上ꎮ 调节刀片的厚度为 8~15 μmꎮ
   离克隆与果刺发育有关的 RrGL2ꎬ对 RrGL2 基因进                         将切出的蜡带ꎬ平展于盒内以供展片ꎮ 之后
   行了生物信息分析和时空表达检测ꎬ可为进一步研                            经 显 微 镜 ( BX53ꎬ Olympusꎬ Japan ) 观 察ꎬ SPOT
   究刺梨果刺形成和发育的分子机制以及通过基因工                            FLEX  TM  CCD 拍摄(Diagnostic InstrumentꎬUSA)ꎮ
   程培育刺梨无刺果实提供了遗传资源和理论基础ꎮ                            1.2 RNA 提取和纯化
                                                         使用 Trizol 试 剂 ( TaKaRaꎬ Japan) 提 取 茎、 叶
   1  材料与方法                                          片、花芽、种子和花后 3 周、5 周和 7 周的皮刺部位

                                                     的总 RNAꎬ具体步骤参考试剂盒说明ꎮ 先用 DNA
   1.1 植物材料和细胞学分析                                    酶(TaKaRaꎬJapan) 处理 RNA 样品ꎮ 然后根据试
       采集刺梨‘ 贵农 5 号’ 的叶片和果实后ꎬ一部                      剂盒说明使用 oligo dT - 接头引物的 RT ̄PCR Kit

   分立即在液氮中冷冻并储存在 - 80 ℃ ꎮ 选择叶、                       (TaKaRaꎬJapan)将提取的 RNA 进行逆转录ꎮ
   幼果和成熟果实并收集花后 3 周、5 周和 7 周的果                       1.3 分离 GL2 cDNA
   刺以检测 RrGL2 的表达水平ꎮ 另一部分通过体视                        1.3.1 3′RACE 的合成  利用 3′ RACE(TaKaRaꎬJa ̄

   显微镜(SZX7ꎬOLYMPUSꎬJapan)观察并拍照ꎮ                     pan)试剂盒以刺梨叶片提取的 RNA 进行第一链
       采摘不同时期的幼芽用 FAA 固定液固定ꎬ先在                       cDNA 合 成ꎮ 根 据 NCBI ( https: / / www. ncbi. nlm.

   离心管中装入 3 mL 固定液ꎬ将样品放入固定液中ꎬ                        nih.gov / )下载的其他生物所报道的与果刺发育有
   封口膜封口ꎬ用解剖针在封口膜上扎几个小孔ꎬ然后                           关的 GL2 同源序列设计引物ꎮ 用引物进行两轮
   抽真空ꎬ抽过真空后再加入 2 mL 固定液(样品与固                        PCR 扩增基因的 3′ 末端( 表 1)ꎮ 第一轮 PCR:首
   定液之比约为 1 ∶ 20)ꎮ 若长期保存应将固定液换                       先 94 ℃ 变性 3 minꎬ然后进行 20 个循环的扩增
   成 70%酒精ꎬ4 ℃ 冰箱保存ꎮ 第 1 天用 70%酒精过                   (94 ℃ 30 sꎬ55 ℃ 30 sꎬ72 ℃ 2 min)和最后 72 ℃
   夜ꎬ第 2 天用 85%酒精、95%酒精、无水酒精、无水酒                     延伸 10 minꎮ 然后以第一轮 PCR 产物作为第二次
   精、1 / 5 二甲苯、2 / 5 二甲苯、3 / 5 二甲苯、4 / 5 二甲          PCR 扩增的模板ꎬ并且在与第一轮 PCR 相同的条
   苯、纯二甲苯进行梯度洗脱ꎬ纯二甲苯处理后加碎蜡                           件下运行 35 个循环ꎮ


                                    表 1  GL2 cDNA 克隆 RACE 引物
                       Table 1  Primers used for GL2 cDNA isolation from Rosa roxburghii
                                                                               退火条件
                                                                            Annealing conditions
          引物             引物序列 (5′-3′)               应用
         Primer       Sequence of primer (5′-3′)  Application
                                                                        温度               时间
                                                                    Temperature (℃ )   Time (min)
         RrGL2 ̄1      TAGCTGCATAAATGCTTACG       1st of 3′ RACE          55               2
         RrGL2 ̄2      AATCGCAGGAACGAGTGGG        2nd of 3′ RACE          55               2
         RrGL2 ̄3      GGGGTGACTCCTTGAACA           5′ RACE               55               2



   1.3.2 5′RACE 的合成  根据 SMARTerTM RACE cD ̄           1.4 克隆和测序
   NA 扩增试剂盒 ( No. 634923ꎬClontech)ꎬ以叶片总                  PCR 产物用 1%琼脂糖凝胶检测ꎬ挖胶回收后
   RNA 为模板合成 cDNA 第一链ꎮ 按照上述 3′末端                     以 琼 脂 糖 凝 胶 DNA 纯 化 试 剂 盒 ( DV805Aꎬ

   的序列合成基因特异性引物(表 1)进行 Touch ̄down                    TaKaRaꎬ Janpan ) 纯 化ꎬ 克 隆 到 pMD18 ̄T 载 体
   PCR:首先(94 ℃ꎬ30 sꎻ72 ℃ꎬ90 s)5 个循环ꎬ然后               (TaKaRaꎬJanpan) 中ꎬ最 后 热 激 法 转 化 大 肠 杆 菌
   (94 ℃ꎬ30 sꎻ70 ℃ꎬ30 sꎻ72 ℃ꎬ1 min)5 个循环ꎬ最后          DH5α 菌株( TransꎬChina)ꎮ 阳性克隆由上海生工

   (94 ℃ꎬ30 sꎻ55 ℃ꎬ2 minꎻ72 ℃ꎬ2 min)30 个循环ꎮ          生物工程技术服务有限公司(中国上海)测序ꎮ
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