Page 120 - 《广西植物》2023年第11期
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2 0 8 0                                广  西  植  物                                         43 卷
            子休眠、促进种子萌发及其生理生化等方面研究奠                             以上萌发阶段各取样约 3 gꎬ用清水冲洗干净ꎬ吸
            定基础ꎮ                                               干表面的水分ꎬ立即放入液氮中冻存 10 minꎬ再移
                                                               入-80 ℃ 冰箱中保存ꎬ用于 RNA 提取ꎮ 上述取样
            1  材料与方法                                           均 3 次生物学重复ꎮ
                                                               1.4 建库测序
            1.1 材料和试剂                                              取上 述 沙 藏 前 ( A)、 萌 发 后 ( B)、 微 根 状 茎
                 试验材料采集于福建省泰宁县ꎬ经福建省农                           (C)、绿色微根状茎( D)4 个萌发阶段的种子各约
            业科学院农业生物资源研究所陈菁瑛研究员鉴定                              0.5 gꎬ采用 DP441 ̄RNAprep Pure 多糖多酚植物总
            为多花黄精( Polygonatum cyrtonema)ꎬ种植于邵武                RNA 提取试剂盒[ 天根生化科技( 北京) 有限公
            市和平镇和平村林下ꎮ 2019 年 11 月采集 10 株果                     司]分别提取各萌发阶段的总 RNAꎬ3 次生物学重
            皮发黑的成熟的果实ꎬ经 8 d 堆置发酵后ꎬ用手捏                          复ꎮ NanoPhotometer:检测 RNA 纯度( OD 260 / 280
            碎变软的果实ꎬ漂去果皮等杂质并用水清洗ꎬ干净                             及 OD 260 / 230 比值) 和 Agilent 2100 Bioanalyzer:

            的种子作为试验材料备用ꎮ                                       检测 RNA 完整性ꎮ 进一步使用试剂盒 Illumina 的
                                                                       ®
                 DP441 ̄RNAprep Pure 多 糖 多 酚 植 物 总 RNA          NEBNext UltraTM RNA Library Prep Kitꎬ参照说明
            提取试剂盒ꎬ购自天根生化科技( 北京) 有限公司ꎻ                          书构 建 文 库ꎮ 构 建 文 库 后ꎬ 先 使 用 Qubit 2. 0
                    ®  UltraTM RNA Library Prep Kitꎬ 购 自
            NEBNext                                            Fluorometer 初 步 定 量ꎬ 再 使 用 Agilent 2100
                                    ®                          Bioanalyzer 检测文库的 insert sizeꎬ符合预期后ꎬ用
            Illuminaꎬ Inc.ꎻ TransScript  All ̄in ̄One First ̄Strand
            cDNA Synthesis SuperMix for qPCR( One ̄Step gDNA    qRT ̄PCR 对文库有效浓度进行准确定量ꎮ 库检合
            Removal ) ( AT341 )ꎬ PerfectStart  ®  Green qPCR   格后ꎬ由 北 京 诺 禾 致 源 科 技 股 份 有 限 公 司 应 用
            SuperMix (DyeⅡ)ꎬ购自北京全式金生物技术有限                      Illumina HiSeq 2500 完成序列的测定ꎮ
            公司ꎻ无水乙醇ꎬ购自西陇科学股份有限公司ꎮ                              1.5 数据分析
            1.2 仪器和设备                                          1.5.1 数据组装及注释  将获得的 Raw reads 去除
                 NanoPhotometer ( 德 国 Implen 公 司 )ꎻ Agilent    带接头、含 N 和低质量 readsꎬ获得 Clean dataꎬ并进
            2100 Bioanalyzer ( 安捷伦科技有限公司)ꎻ5424R                行 Q20、Q30 和 GC 含量计算ꎮ 当前多花黄精尚无
            高速低温离心机( 德国 Eppendorf 公司)ꎻ2100 凝                   参考基因组序列ꎬ因此本研究采用 de novo 组装方
            胶成像仪( 上海勤翔科学仪器有限公司)ꎻ水平电                            法ꎬ使用 Trinity 软件对 Clean data 进行拼接、组装ꎬ
            泳装置(北京市六一仪器厂)ꎻ海尔 MI ̄2270M (N)                      进一步通过 Corset( Davidson & Oshlackꎬ 2014) 软
            微波炉(青岛海尔微波制品有限公司)ꎻ微量紫外-                            件ꎬ对转录本聚类去冗余ꎬ最终每个 cluster 被定义
            可见光分光光度计( NanoDrop One) [ 赛默飞世尔                    为“ Unigene”ꎬ 用 BUSCO ( Benchmarking Universal
            科技( 中国) 有限公司]ꎻAE124 / JY10002 型电子                  Single ̄Copy Orthologs) 对拼接得到的 Trinity. fastaꎬ
            分析天平(上海舜宇恒平科学仪器有限公司)ꎻABI                           unigene. fasta 和 cluster. fasta 进行拼接质量评估ꎬ
            QuantStudio 3 荧光定量 PCR 仪[ 赛默飞世尔科技                  作为 后 续 分 析 的 参 考 序 列ꎮ 使 用 NCBI blast 对

            (中国)有限公司]ꎮ                                         Unigene 进行 Nt 注释ꎬDiamond 对 Unigene 进行 Nr、
            1.3 材料处理                                           KOG / COG、Swiss ̄Prot 注释ꎬ HMMER 对 Unigene 进
                 将洗干净的种子用无菌水冲洗 10 遍ꎬ立即取                        行 Pfam 注释ꎬKAAS 对 Unigene 进行 KEGG 注释ꎬ

            约 3 g 种子ꎬ放入液氮中冻存 10 minꎬ然后移入-80                    Blast2 GO 进行 GO 注释ꎮ
            ℃ 冰箱中保存ꎬ直到 RNA 提取(图 1: A)ꎮ 剩下的                     1.5.2 基因表达水平分析  采用 RSEM 软件( Li &
            种子用于沙藏ꎬ沙藏所需的河沙需经过 121 ℃ 灭                          Deweyꎬ 2011)ꎬ调用 Bowtie2 对比并对结果进行统
            菌 30 minꎬ并用少量的无菌水保持河沙湿润ꎬ沙藏                         计ꎬ以 Trinity 拼 接 得 到 的 转 录 组 作 为 参 考 序 列
            期间每周定期检查并用无菌水补充水分ꎮ 沙藏                              (Ref)ꎬ将每个样品的 clean reads 往 Ref 上做匹配ꎬ
            150 d 后ꎬ挑选胚刚突破种皮的种子(图 1: B)和初                      获得单个样品的匹配率ꎬ统计每个样品中某基因比
            步形成的第一个微根状茎的种子( 图 1: C)ꎬ种植                         对到的 reads 数目ꎬ然后进行 FPKM (expected number
            20 d 后ꎬ挑选变绿的微根状茎的种子( 图 1: D)ꎬ                      of Fragments Per Kilobase of transcript sequence per Mil ̄
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