Page 134 - 《广西植物》2024年第7期

１ ３ ３ ４ 广 西 植 物 ４４ 卷
及 光 合 作 用 的 ＤＥＧｓ 主 要 表 现 为 下 调 表 达 等ꎬ２０２１)ꎮ 因此推测ꎬＹＬ 受到强光或缺水胁迫ꎬ
(ＨＥＭＡ、ＴＩＭ、ＧＡＰＡ、ＬＨＣ 等)ꎬ会造成光合作用受 诱导 ＭＹＢ、ｂＨＬＨ 等转录因子表达上调并参与类黄
阻ꎬ进而导致下游的糖酵解、ＴＣＡ 循环等碳代谢过 酮的生物合成ꎬ促进黄酮类化合物的产生ꎮ
程受到抑制( 宋建民等ꎬ１９９８)ꎮ 糖酵解和 ＴＣＡ 循
环的中间体是黄酮类物质碳骨架的主要来源( 刘 ４ 结论
健伟ꎬ２０１６)ꎬ代谢速率下降会影响类黄酮的生物
合成ꎮ 然而ꎬ代谢组数据分析表明ꎬ两个代谢通路 本研究通过代谢组和转录组联用技术探索赤

的中间产物及相关酶的含量在 ＹＬ 中无显著变化ꎮ 皮青冈叶色黄化的形成机制ꎮ 结果表明ꎬＹＬ 金黄
并且ꎬＹＬ 组中糖酵解途径的丙酮酸激酶( ｐｙｒｕｖａｔｅ 叶色可能是受到叶绿素合成受阻、叶绿体发育异
ｋｉｎａｓｅ)编码基因表达上调了 ３.１４ 倍ꎬＴＣＡ 循环中 常以及黄酮类物质合成加强等因素的综合作用ꎮ
苹果酸合酶(ｍａｌａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ)编码基因表达上调达 此外ꎬ在 ＹＬ 组还发现 ＭＹＢ 和 ｂＨＬＨ 家族的基因表
２０.４２ 倍ꎬ说明黄化突变促进了叶片中糖酵解和 达水平显著上调ꎬ证实了该两类转录因子参与调
ＴＣＡ 循环的代谢ꎮ 相同现象也在赤霞珠葡萄的黄 控类黄酮的生物合成ꎮ 本研究拓展了对赤皮青冈
化突变体中被发现ꎬ原因可能是黄化叶片对碳源 黄叶表型形成机制的认识ꎬ为更多“ 金叶” 类型园
和氮源的征调能力更强(陈迎春ꎬ２０１１)ꎬ使得黄酮 林植物资源的选育工作提供了理论依据ꎮ
类物质合成的碳骨架供应充足ꎮ 此外ꎬ由于叶绿
素合成受阻ꎬ减少了对氮的消耗ꎬ因此氮积累也可
能在一定程度上促进了黄酮类物质的合成与积 参考文献:
累ꎬ并为 ＹＬ 叶色黄化表现的形成提供了物质基础
ＡＮ ＪＰꎬ ＬＩＵ Ｘꎬ ＬＩ ＨＨꎬ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１７. Ａｐｐｌｅ ＲＩＮＧ Ｅ３ ｌｉｇａｓｅ
(江新凤ꎬ２０２１)ꎮ ＭｄＭＩＥＬ１ ｉｎｈｉｂｉｔｓ ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｂｙ
３.３ 转录因子参与 ＹＬ 叶色黄化过程 ｕｂｉｑｕｉｔｉｎａｔｉｎｇ ａｎｄ ｄｅｇｒａｄｉｎｇ ＭｄＭＹＢ１ ｐｒｏｔｅｉｎ [ Ｊ]. Ｐｌａｎｔ
转录因子对生物的生长发育具有重要的调节 Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌꎬ ５８(１１): １９５３－１９６２.
ＣＨＥＮ ＹＣꎬ２０１１. Ｔｈｅ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ
作用ꎬ许多种类还参与对非生物胁迫的应答( Ｓｕｎ
ｇｅｎｅｓ ｏｆ ａ ａｌｂｉｎｏ ｍｕｔａｎｔ ｉｎ ｃａｂｅｒｎｅｔ ｓａｕｖｉｇｎｏｎ ｇｒａｐｅｖｉｎｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０２２)ꎮ 在 ＹＬ 中ꎬ 转 录 因 子 富 集 最 多 的
[Ｄ]. Ｔａｉａｎ: Ｓｈａｎｄｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ: ３１ － ５６.
ＤＥＧｓ 为 ＭＹＢ、ＡＰ２ / ＥＲＦ 和 ｂＨＬＨꎮ Ａｎ 等 ( ２０１７) [陈迎春ꎬ ２０１１. 赤霞珠葡萄黄化突变体生理特性及相关
研究表明ꎬＭＹＢ 家族转录因子能够介导类黄酮合 基因分析 [Ｄ]. 泰安: 山东农业大学: ３３－４０.]
成途径中很多关键酶的转录ꎬ促进黄酮类物质产 Ｅｄｉｔｏｒｉａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｏｆ Ｃｈｉｎａ Ｆｌｏｒａ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ１９９８. Ｆｌｏｒａ Ｒｅｐｕｂｌｉｃａｅ Ｐｏｐｕｌａｒｉｓ Ｓｉｎｉｃａｅ: Ｖｏｌ. ２２
生ꎮ ｂＨＬＨ 转录因子则被证实参与对环境胁迫的
[Ｍ]. Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓ: ３２６. [中国科学院中国植物
应答ꎬ并能协同 ＭＹＢ 调控类黄酮生物合成( Ｌｉｕ ｅｔ 志编辑委员会ꎬ １９９８. 中国植物志: 第二十二卷 [Ｍ]. 北
ａｌ.ꎬ ２０１８ꎻＷａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１８)ꎮ 在 ＹＬ 组中ꎬＣＨＳ、 京: 科学出版社: ３２６.]
ＣＨＩ、Ｆ３Ｈ、ＦＬＳ 等类黄酮合成关键酶的基因表达上 ＧＲＡＢＨＥＲＲ ＭＧꎬ ＨＡＡＳ ＢＪꎬ ＹＡＳＳＯＵＲ Ｍꎬ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１. Ｆｕｌｌ￣
ｌｅｎｇｔｈ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅ ａｓｓｅｍｂｌｙ ｆｒｏｍ ＲＮＡ￣Ｓｅｑ ｄａｔａ ｗｉｔｈｏｕｔ ａ
调ꎬ可能是受 ＭＹＢ 和 ｂＨＬＨ 转录因子的调控ꎮ 此
ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｇｅｎｏｍｅ [Ｊ]. Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌꎬ ２９(７): ６４４－６５２.
外ꎬＡＰ２ / ＥＲＦ 家族 ４ 个 ＤＥＧｓ 表达发生显著改变ꎬ
ＧＵＳＴＡＦＳＳＯＮ Ａꎬ １９４２. Ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｖａｒｉｏｕｓ
该基因家族主要参与强光照、高温、强光等非生物 ｔｙｐｅ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｌ ｍｕｔａｔｉｏｎｓ [ Ｊ]. Ｈｅｒｅｄｉｔａｓꎬ ２８(３/ ４):
胁迫的应激反应( Ｗｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１５)ꎮ ＷＲＫＹ、ＨＳＦ ４８３－４９２.
ＨＵ ＧＳꎬＹＡＬＰＡＮＩ ＮꎬＢＲＩＧＧＳ ＳＰꎬｅｔ ａｌ.ꎬ１９９８. Ａ ｐｏｒｐｈｙｒｉｎ
等与逆境胁迫相关的 ＤＥＧｓ 也出现富集ꎬ表明 ＹＬ
ｐａｔｈｗａｙ ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ ｉｓ ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ ｏｆ ａ
黄化突变体可能受到环境胁迫ꎮ 进一步分析胁迫
ｄｏｍｉｎａｎｔ ｄｉｓｅａｓｅ ｌｅｓｉｏｎ ｍｉｍｉｃ ｍｕｔａｎｔ ｏｆ ｍａｉｚｅ [Ｊ]. Ｐｌａｎｔ
条件发现ꎬ其可能源于强光或水分缺失ꎮ 黄化突 Ｃｅｌｌꎬ １０(７): １０９５－１１０５.
变体因缺少叶绿素而更容易遭受强光胁迫ꎮ 江新 ＪＩＡＮＧ ＸＦꎬ２０２１. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｔｅａ
凤(２０２１)研究证实强光胁迫能诱导 ＭＹＢ 基因上 ｇｅｒｍｐｌａｓｍ ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ｉｎ Ｊｉａｎｇｘｉ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ ａｎｄ ｍｕｌｔｉｏｍｉｃｓ
ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｓｈｏｏｔ ｅｔｉｏｌａｔｉｏｎ ｉｎ Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓｉｎｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
调并参与植株黄化过程ꎮ 此外ꎬ更快的蒸腾速率
Ｈｕａｎｇｊｉｎｊｕ [ Ｄ ]. Ｗｕｈａｎ: Ｈｕａｚｈｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
可能使 ＹＬ 遭受水分胁迫ꎮ ＹＬ 的蒸腾速率是 ＮＹＬ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ: ４４－８２. [江新凤ꎬ ２０２１. 江西特异茶树资源评
的 １.４２ 倍ꎬ蒸腾速率过快易导致植株缺水(张丽霞 价、鉴定及“黄金菊”新梢黄化的多组学分析 [Ｄ]. 武汉: