Page 160 - 《广西植物》2023年第7期
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1 3 2 8                                广  西  植  物                                         43 卷
            蓖麻根腐病抗性鉴定的有效方法和标准ꎻ(2) 对野                               发病率(%)= (发病株数 / 调查株数) ×100ꎻ
            生材料ꎬ尤其是中国华南野生材料的育种价值作                                  抗病材料比率(%) = [(1 级材料数 + 2 级材
            出科学评价ꎬ筛选出一批育种急需的抗病资源ꎻ                              料数) / 材料总数 ] ×100ꎮ
            (3)建立可用于辅助选择的分子标记ꎬ为蓖麻抗根                            1.5 抗病性分子标记的建立

            腐病育种奠定重要基础ꎮ                                        1.5.1 基因组 DNA 的提取与检测  采用改良的
                                                               CTAB 法 ( Cullingsꎬ 2010) 提 取 基 因 组 DNAꎮ 用
            1  材料与方法                                           1%的 琼 脂 糖 凝 胶 电 泳 检 测 DNA 的 完 整 性ꎬ 用
                                                               NaNoDRop ̄2000 仪器检测 DNA 的质量和浓度ꎬ统
            1.1 试验材料                                           一稀释至 30 ngμL 后ꎬ-20 ℃ 保存备用ꎮ
                                                                                  ̄1
            1.1.1 蓖麻材料  供试材料由 3 部分组成:一是广                       1.5.2 多态性引物的筛选  先构建极端抗、感材料
            东海洋大学蓖麻课题组提供的 66 份自交系和杂                            的 DNA 混池ꎬ用于筛选多态性引物ꎮ 再用小群体
            交种ꎻ二是来自 11 个国家 15 个地区的 65 份自交                      抗、感个体验证筛选出的多态性引物ꎬ并对非多态
            系、杂交种和少量野生材料ꎻ三是 121 份中国华南                          性引物进行再次筛选ꎬ以防多态性引物的遗漏ꎮ
            野生材料ꎮ                                              1.5.3 PCR 扩增及产物鉴定  使用 10 μL 的反应
                                                                                              ̄1
            1.1. 2 供 试 菌 株      供 试 菌 株 为 茄 腐 镰 孢 菌            体系ꎬ包括模板 1 μL(30 ngμL )、引物 1 μL(10
            (Fusarium solani)ꎬ由广东海洋大学滨海农业学院                    μmol L )、 2 × Taq PCR Master Mix 4 μL ( 10 ×
                                                                        ̄1
                                                                                      ̄1                      ̄1
            植物病理研究室分离、保存和提供ꎮ                                   Buffer 2 μL、25 mmolL MgCl 1.6 μL、5 UμL
                                                                                           2
            1.2 材料的种植                                          Taq DNA 聚合酶 0.2 μL、10 mmolL dNTPs 0.2
                                                                                                  ̄1
                 用 2.5%的次氯酸钠溶液浸泡种子 10 minꎬ经                    μL)、ddH O 4 μLꎮ 扩增程序:94 ℃ 预变性 5 minꎻ
                                                                       2
            自来水清洗后ꎬ用 50 ℃ 温水浸种 30 minꎬ洗净后                      94 ℃ 变性 30 sꎬ55 ℃ 复性 30 sꎬ72 ℃ 延伸 45 sꎬ共
            播种于盛有灭菌营养基质的育苗盘ꎬ每穴播 1 粒                            35 个循环ꎻ72 ℃ 终延伸 7 minꎻ4 ℃ 保存ꎮ PCR 扩
            种子ꎮ 当幼苗四叶一心时ꎬ进行人工接种ꎮ 在接                            增在 Biorad(My Cycler)型 PCR 仪进行ꎮ 扩增产物
            种后第 4 天ꎬ选择规格一致的幼苗移栽到花盆中ꎬ                           用 6%非变性聚丙烯酰胺凝胶分离ꎬ220 V 恒压电
            每盆 5 棵ꎬ每个材料 3 盆ꎮ                                   泳分离 2.5 hꎮ 银染、水洗、显影后读带ꎮ
            1.3 孢子悬浮液的制备及接种方法                                  1.5.4 基因型数据的读取  采用 0、1 数据记录电泳
                 将试管保存的茄腐镰孢菌转接到 PDA 培养基                        分离 结 果ꎬ 在 相 同 位 置 上ꎬ 有 带 记 为 1ꎬ 无 带 记
            上培养 7 dꎬ打取直径 0.5 cm 的菌饼ꎬ接种到 PDA                    为 0ꎮ
            培养基中扩繁ꎻ7 d 后加入无菌水ꎬ刮取表面菌丝ꎬ                          1.5.5 相关回归分析  参照单标记定位原理(翟虎渠
            4 层纱布过滤后ꎬ用血球计数板在光学显微镜下计                            和王健康ꎬ2007)ꎬ对 252 份材料作抗性和分子标记
            算分生孢子的数量ꎬ用无菌水将孢子浓度调至 1×                            间的回归分析ꎬ若回归关系显著ꎬ则为抗病分子标
            10 个mL ꎮ 四叶一心时ꎬ采用灌根法接种ꎬ即在                        记ꎮ 用 SPSS 26.0 统计分析软件处理相关数据ꎮ
                        ̄1
               6
            每株幼苗根际周围的基质中注射 15 mL 孢子悬浮
            液ꎮ 接种后的材料置于温室内培养ꎬ温度 20 ~ 28                        2  结果与分析
            ℃ 、相对湿度 70% ~ 80%ꎬ自然光照明ꎮ
            1.4 抗病性鉴定                                          2.1 菌株的培养和孢子悬浮液的制备
                 采用接种后的枯萎天数和发病率作为评价指                               培养基上菌株长势良好( 图 1:AꎬB)ꎬ光学显
            标ꎬ只要有枯萎就算发病ꎮ 接种后ꎬ每天调查不同                            微镜下分生孢子形态正常( 图 1:C)ꎮ 经镜检ꎬ孢
            材料的发病时间、发病株数并计算发病率和抗病                              子浓度为 1×10 个mL ꎮ
                                                                                     ̄1
                                                                            6
            材料比率ꎬ直至无新的发病株出现( 本试验为 60                           2.2 抗病性鉴定
            d)ꎬ才停止调查ꎮ                                              不同材料的发病率存在明显差异( 表 1)ꎮ 最
                 抗性评价标准:1 级( 高抗)ꎬ60 d 以上ꎻ2 级                   低的 为 0ꎬ 有 105 份 材 料ꎬ 均 为 高 抗ꎻ 最 高 的 为
            (中抗)ꎬ46 ~ 60 dꎻ3 级 31 ~ 45 dꎻ4 级 16 ~ 30 dꎻ5       100%ꎬ有 5 份材料ꎬ发病最快ꎬ均为高感ꎬ表明发病
            级 1 ~ 15 dꎮ                                        条件充分、抗性鉴定结果可靠(图 2)ꎮ
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